Turkey Tail: Entdecke die Kraft eines traditionsreichen Pilzes

Geschichte, Forschung, Anwendung und Hinweise zur Auswahl hochwertiger Turkey Tail Produkte in einem Artikel.

Turkey Tail gehört zu den bekanntesten Vitalpilzen und findet sowohl in alten Heiltraditionen als auch in aktueller Forschung Beachtung. In diesem Text erfährst Du, wie er wirkt, wofür er eingesetzt wird und worauf Du beim Kauf achten solltest.

Inhalt dieses Artikels:

1. Was sind Vitalpilze?
2. Was ist Turkey Tail?
3. Die Wissenschaft hinter den Vorteilen
4. Gesundheitliche Vorteile
5. Wie Du ein hochwertiges Produkt kaufst
6. Dosierung, Sicherheit, Nebenwirkungen
7. Anwendung: Pulver oder Kapseln
8. Turkey Tail für Haustiere
9. Häufig gestellte Fragen
10. Ressourcen / Quellen

Was sind Vitalpilze?

Vitalpilze sind essbare Pilze mit einer Vielzahl bioaktiver Verbindungen. Jedes Pilz‑Taxon hat ein spezifisches Wirkstoffprofil und kann bestimmte Körpersysteme unterstützen. Beta‑Glucane sind oft zentral und modulieren die Immunantwort. Laborstudien zeigen, dass diese Polysaccharide Immunzellen wie Monozyten, natürliche Killerzellen, Makrophagen und dendritische Zellen aktivieren können.

Was ist Turkey Tail?

Turkey Tail heißt wissenschaftlich Trametes versicolor. Er ist leicht an seinen fächerförmigen, mehrfarbigen Ringen zu erkennen. In Asien ist er seit Langem als Heilpilz bekannt. Er wächst auf verrottendem Holz und trägt als Weißfäulepilz zur Nährstoffrückführung im Ökosystem bei.

Trametes versicolor: bekannt als Turkey Tail.

Die Wissenschaft hinter den Vorteilen

Turkey Tail enthält verschiedene primäre und sekundäre Verbindungen wie phenolische Säuren, Flavonoide und Terpenoide. Besonders relevant sind proteingebundene Polysaccharide, bekannt als PSP und PSK. Beide zeigen in präklinischen und klinischen Studien immunstimulierende Effekte.

PSK wurde in Japan isoliert und klinisch erforscht, PSP wurde in China aus ausgewählten Stämmen extrahiert und für die klinische Nutzung zugelassen. Beide gelten als biologische Antwortmodifikatoren, die das Immunsystem in seinem Gleichgewicht unterstützen können.

Turkey Tail wächst in der Natur auf verrottenden Stämmen.

Gesundheitliche Vorteile

Traditionell wurde Turkey Tail für Entgiftung und Stärkung von Organen genutzt. Heute steht vor allem die Immununterstützung im Vordergrund. In-vitro‑Studien deuten zudem auf antioxidative Effekte hin.

Wichtige Anwendungsfelder:

• Adaptogene Effekte
• Immununterstützung
• Ausgeglichene Entzündungsreaktion
• Schutz der DNA
• Darmgesundheit
• Leberunterstützung
• Anti‑Fatigue und Leistungssteigerung
• Unterstützung bei Blutglukose
• Antivirale Potenziale
• Möglichkeiten bei neuroinflammatorischen Zuständen
• Unterstützung bei verschiedenen Krebsformen

Adaptogene Effekte

Adaptogene Pilze helfen dem Körper, auf Stressoren zu reagieren und die HPA‑Achse zu stabilisieren. Turkey Tail kann so zur Stressbalance beitragen.

Unterstützung des Immunsystems

Polysaccharide aus Turkey Tail fördern die Proliferation von T‑ und B‑Zellen. Zellwandkomponenten wie Beta‑D‑Glucane interagieren mit Immunrezeptoren und fördern Immunüberwachung und Antikörperbildung.

Ausgeglichene Entzündungsreaktion

Reactive Sauerstoffspezies (ROS) sind natürliche Stoffwechselnebenprodukte. Ein Gleichgewicht zwischen ROS und Antioxidantien ist wichtig. Studien deuten an, dass Turkey Tail Entzündungsprozesse regulieren und antioxidative Enzyme erhöhen kann, was insbesondere für das altersbedingte Gehirn relevant sein könnte.

Schutz der DNA

Aufgrund hoher Gehalte an phenolischen Verbindungen könnten Turkey Tail Extrakte DNA vor freien Radikalen schützen. Die genauen Mechanismen sind noch Gegenstand der Forschung.

Darmgesundheit

Beta‑Glucane sind resistent gegenüber menschlichen Verdauungsenzymen und wirken im Darm als präbiotische Substanz. Studien zeigen, dass PSP das Wachstum nützlicher Bakterien wie Bifidobacterium und Lactobacillus fördern und das Darmmilieu positiv verändern kann.

Leberunterstützung

Tierstudien mit dem Hepatotoxin CCl4 zeigen, dass PSP antioxidative Schutzmechanismen im Lebergewebe erhöhen kann, etwa durch gesteigerte Enzyme wie SOD und GSH.

Anti‑Fatigue und Sport

Tierstudien deuten darauf hin, dass PSP die Belastbarkeit erhöhen und Ermüdung verzögern kann. Mäuse mit Turkey Tail Vitalpilz-Extrakt zeigten bessere Griffkraft und niedrigere Blutlaktatwerte nach Belastung.

Blutzuckerregulation

Hinweise aus Tierstudien legen nahe, dass PSP die Insulinsensitivität unterstützen könnte. Humanstudien sind noch erforderlich.

Antivirale Effekte

Studien untersuchen PSK/PSP hinsichtlich Effekten gegen Herpes und HIV. Erste Befunde sind vielversprechend, benötigen jedoch weitere klinische Bestätigung.

Neuroinflammation / Meniere

Vorresearch deutet an, dass Turkey Tail neuroinflammatorische Prozesse modulieren kann. Weitere Studien sind nötig.

Turkey Tail und Krebs

Der Fokus vieler Studien liegt auf den krebshemmenden Effekten von Turkey Tail mit über 40 klinischen Studien an mehr als 180.000 Patienten mit Magen-, Darm-, Speiseröhren- und Brustkrebs.

Krebshemmende Allgemeine Vorteile:

Evidenzen zeigen verbesserte Immunfunktion bei Chemotherapiepatienten mit zusätzlicher Einnahme von Turkey Tail gegenüber reiner Chemotherapie [40]. Patienten berichten zudem über bessere Lebensqualität trotz fortgeschrittener Krebserkrankungen sowie reduzierte Nebenwirkungen wie Müdigkeit oder Übelkeit.

Schutz gesunder Zellen während Krebstherapie:

Trotz Chemotherapie könnte Turkey Tail helfen, gesunde Zellen vor toxischen Effekten zu schützen.

Brustkrebs:

Diverse Studien untersuchen das Potenzial von PSK als Zusatztherapie nach Brustkrebsoperationen mit positiven Ergebnissen hinsichtlich Behandlungserfolg [42][43]. Dies deutet darauf hin, dass PSK hilfreich sein kann um Rückfälle zu verhindern.

Darmkrebs:

Daten legen nahe, dass PSK nach Darmkrebsoperationen Verbesserungen bewirken kann [44–46], was den Einsatz als ergänzende Behandlung nahelegt.

Magenkrebs:

Nebenwirkungen nach Magenkrebsoperationen könnten durch PSK-Immuntherapie reduziert werden [47][48]. Diese adjuvante Behandlung zeigt vielversprechende Resultate.

Leukämie:

Tierstudien weisen auf krebshemmende Effekte gegen Leukämiezellen hin: PSP induziert Apoptose (programmierter Zelltod) bei Leukämiezellen [49][50].

Lymphome:

PSK fördert Antikörperproduktion (IgM) sowie Apoptose bei Lymphomzellen; es stärkt T-Zell-Immunität gegen Lymphome [51–54]. Studien zeigen Schutzpotenzial gegen lymphominduzierende Faktoren bei Mäusen.

Lungenkrebs:

Daten deuten darauf hin, dass PSP den Fortschritt fortgeschrittener nicht-kleinzelliger Lungenkarzinome verzögern kann; ergänzende PSK-Behandlung nach Strahlentherapie zeigt positive Effekte [55][56].

Eierstockkrebs:

PSK könnte immunmodulatorisch wirken sowie Chemotherapieeffekte verstärken; Studien untersuchen Interleukin‑2 Produktion während Behandlung [57–60].

Bauchspeicheldrüsenkrebs:

Kombinationstherapien aus Cisplatin + PSK + UFT zeigen Erfolge bei inoperablem Bauchspeicheldrüsenkrebs; zudem fördern PSK Wirkungen programmierter Zellteilung sowie Verstärkung von Chemotherapieeffekten [61–63].

Hautkrebs (Melanom):

PSK zeigte antimetastatische Wirkung gegen Melanomzellen in Tierversuchen – vielversprechender Ansatz gegen Tumorausbreitung [64].

Wie Du ein hochwertiges Produkt kaufst

Fruchtkörper vs Mycelium

Wähle Produkte, die den Fruchtkörper angeben. Mycelium wird häufig auf Getreide gezüchtet; Getreideanteile können die Wirkstoffkonzentration verringern.

Beta‑Glucan‑Gehalt

Achte auf den Beta‑Glucan‑Gehalt. Für eine wirkungsvolle Qualität wird mindestens 25 % empfohlen. Antioxi's Turkey Tail Extrakt liegt über 30 % Beta‑Glucan.

Bio‑Zertifizierung

Pilze können Schadstoffe aus der Umgebung aufnehmen. Bio‑Zertifizierung minimiert das Risiko von Pestizid‑ oder Herbizidbelastungen.

Sicherheitstests

Laborprüfungen auf Schwermetalle und Pestizide sind wichtig. Seriöse Hersteller veröffentlichen Prüfergebnisse oder geben Auskunft dazu.

Extraktionsmethode

Heißwasserextraktion ist für Turkey Tail sinnvoll, da PSP wasserlöslich ist. Manche Produkte nutzen Doppel‑Extraktion für breiteres Wirkstoffspektrum.

Dosierung, Sicherheit, Nebenwirkungen

Dosisempfehlung

Grunddosis: Starte mit 2 Kapseln oder 1 g täglich zur allgemeinen Unterstützung.

Erhöhte Dosis: Für stärkere Effekte kontaktiere uns für eine individuelle Empfehlung.

Flexible Einnahme: Auf nüchternen Magen kann die Aufnahme besser sein. Bei empfindlichem Magen teile die Dosis und nimm sie nach dem Essen.

Sicherheitshinweise

Schwangere und stillende Personen sowie Menschen mit Vorerkrankungen oder Pilzallergien sollten vor Einnahme eine Ärztin oder einen Arzt konsultieren. Patienten in Krebsbehandlung oder unter Anti‑Diabetika sollten vorab Rücksprache mit ihrem behandelnden Arzt halten.

Nebenwirkungen

• Magen‑Darm‑Beschwerden wie Blähungen
• Sodbrennen
• Herzrasen oder Palpitationen
• Übelkeit oder Appetitveränderungen
• Dunkler Stuhl
• Grippeerkrankungsähnliche Symptome

Anwendung: Pulver oder Kapseln

Turkey Tail für Haustiere

Turkey Tail wird auch bei Haustieren eingesetzt. Beobachtete Vorteile sind unter anderem: Verbesserung und Balance des Immunsystems, bessere Verdauung, Bekämpfung von Entzündungen dank Antioxidantien, Kontrolle überschüssiger Hefepilze, Unterstützung während Krebstherapien und Linderung von Nebenwirkungen.

Häufig gestellte Fragen

Sind die Pilze bio-zertifiziert?

Alle unsere Pilze sind biologisch zertifiziert angebaut und zertifiziert worden.

Sind medizinische Pilze während Schwangerschaft oder Stillzeit sicher?

Medizinische Pilze können während Schwangerschaft einige Vorteile bringen wie Stärkung des Immunsystems oder Energiegewinnung; dennoch fehlen belastbare Studien dazu bisher.
Wir empfehlen daher Rücksprache mit Deinem Arzt oder Deiner Hebamme vor Einnahme während Schwangerschaft oder Stillzeit.

Können Kinder medizinische Pilze verwenden?

Forschung zum Einsatz medizinischer Pilze bei Kindern steckt noch in den Kinderschuhen.
Eine interessante Studie aus dem Jahr 2018 untersuchte Reishi-Effekte auf Immunzellen bei Kindern zwischen drei bis fünf Jahren [69].
Die Ergebnisse zeigten eine Erhöhung wichtiger Immunzellzahlen sowie gute Verträglichkeit ohne Auffälligkeiten bei Nieren‑ oder Leberwerten.
Wir empfehlen dennoch Rücksprache mit dem Kinderarzt vor Einführung neuer Produkte.
Empfohlen wird eine reduzierte Dosis (ein Viertel) bei kleinen Kindern.
Weitere kontrollierte Studien sind notwendig zur Wirksamkeitsprüfung bei Kindern.

Pulver oder Kapseln – was ist besser?

Beide Formen bieten dieselben Vorteile; es kommt auf Deine persönliche Vorliebe an.

Sind Mischungen besser als Einzelpilze?

Unsere Acht-Pilz-Mischung bietet einen umfassenden Gesundheitsboost für Allgemeinwohlgefühl und Verdauung.
Für gezielte Unterstützung einzelner Themen empfiehlt sich jedoch ein einzelner Pilz wie Lion’s Mane für kognitive Klarheit oder Reishi gegen Stress.

Sollten Allergiker oder Personen mit Medikamenten vorsichtig sein?

• Schwangere Frauen sowie Stillende sollten vor Einnahme ärztlichen Rat suchen;
• Bei bestehenden Erkrankungen inklusive Pilzallergie sollte Rücksprache gehalten werden;
• Chemotherapiepatienten müssen Rücksprache halten;
• Personen unter Diabetesmedikation ebenfalls;
• Bei Unsicherheiten immer ärztlichen Rat einholen!

Welche Extraktion wird verwendet?

Die beste Extraktionsmethode hängt vom jeweiligen Pilz ab.
Übliche Verfahren sind Alkohol-, Wasser‑ oder Doppel‑Extraktion.
Diese lösen unterschiedliche Wirkstoffe optimal heraus.
Doppel‑Extraktion kombiniert Wasser und Alkohol für maximale Wirksamkeit.

Heißwasserextraktion eignet sich besonders gut für Cordyceps, Turkey Tail & Maitake.
Doppelextraktion passt gut für Lion’s Mane, Reishi & Chaga.

Nutzt Ihr Fruchtkörper oder Mycelium?

Wir verwenden ausschließlich den Fruchtkörper vom Turkey Tail.
Mehr Infos findest Du hier.

Ressourcen / Quellen

1. Kim, H.S., Hong, J.T., Kim, Y. & Han, S.-B. 2011, “Stimulatory Effect of β-glucans on Immune Cells,” Immune Network, vol. 11, no. 4, p. 191.
2. Dou, H., Chang, Y. & Zhang, L. 2019, “Chapter Fifteen - Coriolus versicolor polysaccharopeptide as an immunotherapeutic in China,” L. Zhang (ed.),ScienceDirect, Academic Press,
3. Ohno, R., Yamada, K., Masaoka, T., Ohshima, T., Amaki, I., Hirota, Y., Horikoshi, N., Horiuchi, A., Imai, K. & Kimura, I. 1984, “A randomized trial of chemoimmunotherapy of acute nonlymphocytic leukemia in adults using a protein-bound polysaccharide preparation,” Cancer immunology, immunotherapy: CII, vol. 18, no. 3, pp. 149–154,
4. Harada, M., Matsunaga, K., Oguchi, Y., Iijima, H., Ito, O., Tamada, K., Kimura, G. & Nomoto, K. 1995, “The involvement of transforming growth factor beta in the impaired antitumor T-cell response at the gut-associated lymphoid tissue (GALT),” Cancer Research, vol. 55, no. 24, pp. 6146–6151,
5. Harada, M., Matsunaga, K., Oguchi, Y., Iijima, H., Tamada, K., Abe, K., Takenoyama, M., Ito, O., Kimura, G. & Nomoto, K. 1997, “Oral administration of PSK can improve the impaired anti-tumor CD4+ T-cell response in gut-associated lymphoid tissue (GALT) of specific-pathogen-free mice,” International Journal of Cancer, vol. 70, no. 3, pp. 362–372,
6. Hayakawa, K., Mitsuhashi, N., Saito, Y., Nakayama, Y., Furuta, M., Nakamoto, S., Kawashima, M. & Niibe, H. 1997, “Effect of Krestin as adjuvant treatment following radical radiotherapy in non-small cell lung cancer patients,” Cancer Detection and Prevention, vol. 21, no. 1, pp. 71–77,
7. Nakazato, H., Koike, A., Saji, S., Ogawa, N. & Sakamoto, J. 1994, “Efficacy of immunochemotherapy as adjuvant treatment after curative resection of gastric cancer. Study Group of Immunochemotherapy with PSK for Gastric Cancer,” Lancet (London, England), vol. 343, no. 8906, pp. 1122–1126,
8. Sakamoto, J., Morita, S., Oba, K., Matsui, T., Kobayashi, M., Nakazato, H., Ohashi, Y. & Meta-Analysis Group of the Japanese Society for Cancer of the Colon Rectum 2006, “Efficacy of adjuvant immunochemotherapy with polysaccharide K for patients with curatively resected colorectal cancer: a meta-analysis of centrally randomized controlled clinical trials,” Cancer immunology, immunotherapy: CII, vol. 55, no. 4, pp. 404–411,
9. Yamashita, K., Sakuramoto, S., Mieno, H., Nemoto, M., Shibata, T., Katada, N., Ohtsuki, S., Sakamoto, Y., Hoshi, K., Wang, G., Hemmi, O., Satoh, T., Kikuchi, S. & Watanabe, M. 2015, “Preoperative administration of polysaccharide Kureha and reduced plasma transforming growth factor-β in patients with advanced gastric cancer: A randomized clinical trial,” Molecular and Clinical Oncology, vol. 3, no. 3, pp. 471–478,
10. Trovato, A., Pennisi, M., Crupi, R., Paola, R.D., Alario, A., Modafferi, S., Rosa, G.D., Fernandes, T., Signorile, A., Maiolino, L. & Calabrese, S.C. and V. 2017, “Neuroinflammation and Mitochondrial Dysfunction in the Pathogenesis of Alzheimer’s Disease: Modulation by Coriolus versicolor (Yun-Zhi) Nutritional Mushroom,” Journal of Neurology & Neuromedicine, vol. 2, no. 1,
11. Knežević, A., Živković, L., Stajić, M., Vukojević, J., Milovanović, I. & Spremo-Potparević, B. 2015, “Antigenotoxic Effect of Trametes spp. Extracts against DNA Damage on Human Peripheral White Blood Cells,” The Scientific World Journal,
12. Cui, J. & Chisti, Y. 2003, “Polysaccharopeptides of Coriolus versicolor: physiological activity, uses, and production,” Biotechnology Advances, vol. 21, no. 2, pp. 109–122,
13. https://championhealth.co.uk/insights/stress-statistics/
14. Ho, C.Y., Lau, C.B.S., Kim, C.F., Leung, K.N., Fung, K.P., Tse, T.F., Chan, H.H.L. & Chow, M.S.S. 2004, “Differential effect of Coriolus versicolor (Yunzhi) extract on cytokine production by murine lymphocytes in vitro,” International Immunopharmacology, vol. 4, no. 12, pp. 1549–1557,
15. Ng, T.B. 1998, “A review of research on the protein-bound polysaccharide (polysaccharopeptide, PSP) from the mushroom Coriolus versicolor (basidiomycetes: Polyporaceae),” General Pharmacology: The Vascular System, vol. 30, no. 1, pp. 1–4,
16. Yang, S., Zhuang, T., Si, Y., Qi, K. & Zhao, J. 2015, “Coriolus versicolor mushroom polysaccharides exert immunoregulatory effects on mouse B cells via membrane Ig and TLR-4 to activate the MAPK and NF-κB signaling pathways,” Molecular Immunology, vol. 64, no. 1, pp. 144–151,
17. Torkelson, C.J., Sweet, E., Martzen, M.R., Sasagawa, M., Wenner, C.A., Gay, J., Putiri, A. & Standish, L.J. 2012, “Phase 1 Clinical Trial of Trametes versicolor in Women with Breast Cancer,” ISRN oncology, vol. 2012, p. 251632,
18. Spagnuolo R, Cosco C, Mancina RM, Ruggiero G, Garieri P, Cosco V, Doldo P. Beta-glucan, inositol and digestive enzymes improve quality of life of patients with inflammatory bowel disease and irritable bowel syndrome. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2017 Jun;21(2 Suppl):102-107. PMID: 28724171.
19. van Steenwijk, H. P., Bast, A., & de Boer, A. (2021). Immunomodulating Effects of Fungal Beta-Glucans: From Traditional Use to Medicine. Nutrients, 13(4), 1333.
20. Donatini B. (2014). Control of oral human papillomavirus (HPV) by medicinal mushrooms, Trametes versicolor and Ganoderma lucidum: a preliminary clinical trial. International journal of medicinal mushrooms, 16(5), 497–498.
21. Fang, X., Jiang, Y., Ji, H., Zhao, L., Xiao, W., Wang, Z. & Ding, G. 2015, “The Synergistic Beneficial Effects of Ginkgo Flavonoid and Coriolus versicolor Polysaccharide for Memory Improvements in a Mouse Model of Dementia,” Evidence-based Complementary and Alternative Medicine : eCAM, vol. 2015,
22. Yu, Z.-T., Liu, B., Mukherjee, P. & Newburg, D. 2013, “Trametes versicolor Extract Modifies Human Fecal Microbiota Composition In vitro,” Plant Foods for Human Nutrition, vol. 68, pp. 107–12,
23. Aida, F.M.N.A., Shuhaimi, M., Yazid, M. & Maaruf, A.G. 2009, “Mushroom as a potential source of prebiotics: a review,” Trends in Food Science & Technology, vol. 20, no. 11, pp. 567–575,
24. Pallav, K., Dowd, S.E., Villafuerte, J., Yang, X., Kabbani, T., Hansen, J., Dennis, M., Leffler, D.A., Newburg, D.S. & Kelly, C.P. 2014, “Effects of polysaccharopeptide from Trametes Versicolor and amoxicillin on the gut microbiome of healthy volunteers,” Gut Microbes, vol. 5, no. 4, pp. 458–67,
25. Friedman, M. 2016, “Mushroom Polysaccharides: Chemistry and Antiobesity, Antidiabetes, Anticancer, and Antibiotic Properties in Cells, Rodents, and Humans,” Foods, vol. 5, no. 4, p. 80,
26. Li, X., Chen, P., Zhang, P., Chang, Y., Cui, M. & Duan, J. 2019, “Protein‐Bound β‐glucan from Coriolus versicolor has Potential for Use Against Obesity,” Molecular Nutrition & Food Research, vol. 63, no. 7, p. 1801231,
27. Abdel-Moneim, A.M., Al-Kahtani, M.A., El-Kersh, M.A. & Al-Omair, M.A. 2015, “Free Radical-Scavenging, Anti-Inflammatory/Anti-Fibrotic and Hepatoprotective Actions of Taurine and Silymarin against CCl4 Induced Rat Liver Damage,” PLOS ONE, vol. 10, no. 12, p. e0144509,
28. Chang, Y., Zhang, M., Jiang, Y., Liu, Y., Luo, H., Hao, C., Zeng, P. & Zhang, L. 2017, “Preclinical and Clinical Studies of Coriolus versicolor Polysaccharopeptide as an Immunotherapeutic in China,” Discovery Medicine, vol. 23, no. 127, pp. 207–219,
29. Wang, K.-L., Lu, Z.-M., Mao, X., Chen, L., Gong, J.-S., Ren, Y., Geng, Y., Li, H., Xu, H.-Y., Xu, G.-H., Shi, J.-S. & Xu, Z.-H. 2019, “Structural characterization and anti-alcoholic liver injury activity of a polysaccharide from Coriolus versicolor mycelia,” International Journal of Biological Macromolecules, vol. 137, pp. 1102–1111,
30. Ren, Y., Geng, Y., Chen, H., Lu, Z.-M., Shi, J.-S. & Xu, Z. 2018, “Polysaccharide peptides from Coriolus versicolor: A multi-targeted approach for the protection or prevention of alcoholic liver disease,” Journal of Functional Foods, vol. 40, pp. 769–777,
31. Ho, C.-S., Tung, Y.-T., Kung, W.-M., Huang, W.-C., Leung, W.-K., Huang, C.-C. & Wu, J.-H. 2017, “Effect of Coriolus versicolor Mycelia Extract on Exercise Performance and Physical Fatigue in Mice,” International Journal of Medical Sciences, vol. 14, no. 11, pp. 1110–1117,
32. Wu, Z., Pang, S., Chen, Xiao-xuan, Yu, Y., Zhou, J., Chen, Xi & Pang, L. 2013, “Effect of Coriolus versicolor polysaccharides on the hematological and biochemical parameters and protection against Aeromonas hydrophila in allogynogenetic crucian carp (Carassius auratus gibelio),” Fish Physiology and Biochemistry, vol. 39, no. 2, pp. 181–190,
33. Yang, B.-K., Kim, G.-N., Jeong, Y.-T., Jeong, H., Mehta, P. & Song, C.-H. 2008, “Hypoglycemic Effects of Exo-biopolymers Produced by Five Different Medicinal Mushrooms in STZ-induced Diabetic Rats,” Mycobiology, vol. 36, no. 1, pp. 45–49,
34. Xian, H., Che, H., Qin, Y., Yang, F., Meng, S., Li, X., Bai, Y. & Wang, L. 2017, “Coriolus versicolor aqueous extract ameliorates insulin resistance with PI3K/Akt and p38 MAPK signaling pathways involved in diabetic skeletal muscle,” Phytotherapy Research, vol. 32, no. 3, pp. 551–60,
35. Treatment of recurrent genital herpes with PSK. Kawana T. Proceedings of the International Symposium on Pharmacological and Clinical Approaches to Herpes Viruses and Virus Chemotherapy. Oiso, Japan, Sept. 10-13, 1984. Kono R, Nakajima A (Eds). Amsterdam : Excerpta Medica, 1985. pp. 271–272.
36. In vitro inactivation of herpes simplex virus by a biological response modifier, PSK. Monma Y, Kawana T, Shimizu F. Antiviral Res. 1997;35(3):131–138.
37. Polysaccharopeptide from the Turkey tail fungus Trametes versicolor (L.:Fr.) Pilát inhibits Human Immunodeficiency Virus type 1 reverse transciptase and protease. Ng TB, Wang HX, Wan DCC. Int J Med Mushrooms. 2006;8(1):39–43.
38. A biological response modifier, PSK, inhibits reverse transcriptase in vitro. Hirose K, Hakozaki M, Kakuchi J, Matsunaga K, Yoshikumi C, Takahashi M, Tochikura TS, Yamamoto N. Biochem Biophys Res Commun. 1987;149(2):562–567.
39. Nutritional mushroom treatment in Meniere’s Disease with Coriolus versicolor: a rationale for therapeutic intervention in neuroinflammation and antineurodegeneration. Scuto M, Di Mauro P, Ontario ML, Amato C, Modafferi S, Ciavardelli D, Trovato Salinaro A, Maiolino L, Calabrese V. Int J Mol Sci, 2019;21(1):284.
40. Stamets P. Trametes versicolor (Turkey Tail Mushrooms) and the Treatment of Breast Cancer. Glob Adv Health Med. 2012;1(5):20. doi:10.7453/gahmj.2012.1.5.007
41. Torkelson CJ, Sweet E, Martzen MR, et al. Phase 1 Clinical Trial of Trametes versicolor in Women with Breast Cancer. ISRN Oncol. 2012;2012:251632. doi:10.5402/2012/251632
42. Immunochemotherapies versus chemotherapy as adjuvant treatment after curative resection of operable breast cancer. Iino Y, Yokoe T, Maemura M, Horiguchi J, Takei H, Ohwada S, Morishita Y. Anticancer Res. 1995;15(6B):2907–2911.
43. HLA antigen as predictive index for the outcome of breast cancer patients with adjuvant immunochemotherapy with PSK. Yokoe T, Iino Y, Takei H, Horiguchi J, Koibuchi Y, Maemura M, Ohwada S, Morishita Y. Anticancer Res. 1997;17(4A):2815–2818.
44. Efficacy of adjuvant immunochemotherapy with polysaccharide K for patients with curatively resected colorectal cancer: a meta-analysis of centrally randomized controlled clinical trials. Sakamoto J, Morita S, Oba K, Matsui T, Kobayashi M, Nakazato H, Ohashi Y. Cancer Immunol Immunother. 2006;55(4):404–411.
45. Mitomi, T.,S. Tsuchiya, N. Iljima, K. Aso et al. 1992. Randomized, controlled study on adjuvant immunochemotheraoy with PSK in curatively resected colorectal cancer. The Cooperative Study Group of Surgical Adjuvant Immunotherapy for Cancer of Colon and Rectum (Kanagawa). Diseases of the colon and rectum 35(2):123-130.
46. Ohwada, S., T. Ogawa, F. Makita, Y. Tanahsi, T. Ohya, N. Tomizawa et al. 2006. Beneficial effects of protein-bound polysaccharide K plus tegafur/uracil in patients with stage II or III colorectal cancer: analysis of immunological parameters. Oncology Reports 15: 861:868
47. Efficacy of adjuvant immunochemotherapy with polysaccharide K for patients with curative resections of gastric cancer. Oba K, Teramukai S, Kobayashi M, Matsui T, Kodera Y, Sakamoto J. Cancer Immunol Immunother. 2007;56(6):905–911.
48. Nakazato, H., A. Koike, S. Saji, N. Ogawa, J. Sakamoto. 1994. Efficacy of immunochemotherapy as adjuvant treatment after curative resection of gastric cancer. Study group of immunochemotherapy with PSK for gastric cancer. Lancet 343 (8906):1122-1126.
49. Coriolus versicolor (Yunzhi) extract attenuates growth of human leukaemia xenografts and induces apoptosis through the mitochondrial pathway. Ho CY, Kim CF, Leung KN, Fung KP, Tse TF, Chan H, Lau CB. Oncol Rep. 2006;16(3):609-16.
50. Cytotoxic activities of Coriolus versicolor (Yunzhi) extract on human leukaemia and lymphoma cells by induction of apoptosis. Lau CB, Ho CY, Kim CF, Leung KN, Fung KP, Tse TF, Chan HH, Chow MS. Life Sci. 2004;75(7):797–808.
51. Protein-bound polysaccharide-K (PSK) directly enhanced IgM production in the human B cell line BALL-1. Maruyama S, Akasaka T, Yamada K, Tachibana H. Biomed Pharmacother. 2009;63(6):409–412.
52. Protein-bound polysaccharide K induced apoptosis of the human Burkitt lymphoma cell line, Namalwa. Hattori TS, Komatsu N, Shichijo S, Itoh K. Biomed Pharmacother. 2004;58(4):226–230.
53. Potentiation of T cell immunity against radiation-leukaemia-virus-induced lymphoma by polysaccharide K. Yefenof E, Einat E, Klein E. Cancer Immunol Immunother. 1991;34(2):133–137.
54. Prophylactic intervention in radiation-leukaemia-virus-induced murine lymphoma by the biological response modifier polysaccharide K. Yefenof E, Gafanovitch I, Oron E, Bar M, Klein E. Cancer Immunol Immunother. 1995;41(6):389–396.
55. Coriolus versicolor polysaccharide peptide slows progression of advanced non-small cell lung cancer. Tsang KW, Lam CL, Yan C, Mak JC, Ooi GC, Ho JC, Lam B, Man R, Sham JS, Lam WK. Respir Med. 2003;97(6):618–624
56. Hayakawa, K., N. Mitsuhashi, Y. Saito, M. Takahashi, S. Katano, K. Shiojima, M. Furuta, H. Niibe. 1993. Effect of krestin (PSK) as adjuvant treatment on the prognosis after radical radiotherapy in patients with non-small cell lung cancer. Anticancer Research 13(5C):1815-1820.
57. Effects of cimetidine and PSK on interleukin-2 production by PBL in patients with advanced ovarian carcinoma during the course of chemotherapy. Kikuchi Y, Kizawa I, Oomori K, Iwano I, Kita T, Miyauchi M, Kato K. Nippon Sanka Fujinka Gakkai Zasshi. 1987;39(11):1987–1992.
58. Effects of PSK on interleukin-2 production by peripheral lymphocytes of patients with advanced ovarian carcinoma during chemotherapy. Kikuchi Y, Kizawa I, Oomori K, Iwano I, Kita T, Kato K. Jpn J Cancer Res. 1988;79(1):125–130.
59. Enhancement of anti-cancer activity of cisdiaminedichloroplatinum by the protein-bound polysaccharide of Coriolus versicolor QUEL (PS-K) in vitro. Kobayashi Y, Kariya K, Saigenji K, Nakamura K. Cancer Biother. 1994;9(4):351–358.
60. Antitumour effect of PSK and its combined effect with CDDP on ovarian serous adenocarcinoma-bearing nude mice. Ishii K, Kita T, Hirata J, Tode T, Kikuchi Y, Nagata I. Nippon Sanka Fujinka Gakkai Zasshi. 1993;45(4):333–339.
61. Two cases of unresectable pancreatic cancer responding to combined chemotherapy with cisplatin, PSK and UFT. Sohma M, Kitagawa T, Okano S, Utsumi M, Mutoh E, Takeda S, Kanda M, Suzuki Y, Okamura K, Namiki M. Gan To Kagaku Ryoho. 1987;14(6 Pt 1):1926–1929.
62. PSK-mediated NF-kappaB inhibition augments docetaxelinduced apoptosis in human pancreatic cancer cells NOR-P1. Zhang H, Morisaki T, Nakahara C, Matsunaga H, Sato N, Nagumo F, Tadano J, Katano M. Oncogene. 2003;22(14):2088–2096.
63. Rosehdahl, A.H., C. Sun, D. Wu, R. Anderson. 2012. Polysaccharide-K (PSK) increases p21 (WAF/Cip1) and promotes apoptosis in pancreatic cancer cells. Pancreatology 12(6):467-74.
64. Antimetastatic effect of PSK, a protein-bound polysaccharide, against the B16-BL6 mouse melanoma. Matsunaga K, Ohhara M, Oguchi Y, Iijima H, Kobayashi H. Invasion Metastasis. 1996;16(1):27–38.
65. Alberts, B., Johnson, A., Lewis, J., Raff, M., Roberts, K. and Walter, P. (2020) Innate Immunity.
66. Miyake Y, Nishimura J, Kato T, Ikeda M, Tsujie M, Hata T, Takemasa I, Mizushima T, Yamamoto H, Sekimoto M, Nezu R, Doki Y, Mori M; Multi-center Clinical Study Group of Osaka, Colorectal Cancer Treatment Group (MCSGO). Phase III trial comparing UFT + PSK to UFT + LV in stage IIB, III colorectal cancer (MCSGO-CCTG). Surg Today. 2018 Jan;48(1):66-72. doi: 10.1007/s00595-017-1555-1. Epub 2017 Jun 20. PMID: 28634730.
67. Ohwada S, et al. Adjuvant immunochemotherapy with oral Tegafur/Uracil plus PSK in patients with stage II or III colorectal cancer: a randomised controlled study. Br J Cancer 2004; 90(5): 1003-10.
68. Fritz H, Kennedy DA, Ishii M, Fergusson D, Fernandes R, Cooley K, Seely D. Polysaccharide K and Coriolus versicolor extracts for lung cancer: a systematic review. Integr Cancer Ther. 2015 May;14(3):201-11. doi: 10.1177/1534735415572883. Epub 2015 Mar 17. PMID: 25784670.
69. Henao SLD, Urrego SA, Cano AM, Higuita EA. Randomized Clinical Trial for the Evaluation of Immune Modulation by Yogurt Enriched with β-Glucans from Lingzhi or Reishi Medicinal Mushroom, Ganoderma lucidum (Agaricomycetes), in Children from Medellin, Colombia. Int J Med Mushrooms. 2018;20(8):705-716. doi: 10.1615/IntJMedMushrooms.2018026986. PMID: 30317947.

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